Técnicas Macroscopicas Parásitoscopicas

TAMIZADO

Practica 7

Introducción: Esta técnica permite observar directamente las características morfológicas de los parásitos adultos, enteros o fraccionados de los metazoarios.

Material:

• ·        Coladera de tamiz fino
• ·        Abatelenguas
• ·        Caja petri
• ·        Pinzas

Procedimiento:
1.   Colocar pequeñas porciones de material fecal en la coladera con ayuda del abatelenguas.
2.   Dispersar la muestra con el abatelenguas  y agregarle agua hasta lograr un tamizado lo más limpio posible.

3.   Revisar cuidadosamente las partículas de heces que hayan quedado en la coladera.

4.   Los parásitos encontrados colocarlos en una caja petri con solución salina.

  

5.    Se identifica la parte del parásito o el parásito completo.

 Conclusión:

Esta técnica es muy sencilla, no requiere de equipo con una coladera es mas que suficiente y si se pueden apreciar bien los parásitos o parte de ellos.

METODO DE CONCENTRACION POR FLOTACION DE WILLIS

METODO DE CONCENTRACION POR FLOTACION DE WILLIS

PRACTICA 6

Introducción.

Este método es utilizado para la investigación de protozoarios y helmintos que consiste en preparar la materia fecal con solución saturada de cloruro de sodio.

Los huevos y helmintos  de peso menor que la solución saturada con cloruro de sodio tienden a subir y adherirse a un cubreobjetos colocado en contacto con la superficie del liquido.

Material.

• ·         Vaso de precipitado
• ·         Gasa
• ·         Embudo
• ·         Tubo de ensaye
• ·         Portaobjetos
• ·         Cubreobjetos
• ·         Solución saturada de NaCl
• ·         Yodo-lugol

Procedimiento.

 1.   Tomar aproximadamente 1 gr. de heces con un abatelenguas.
2. Colocar muestra en un vaso de precipitado y mezclar con 10 ml de solución saturada de NaCl.

3. En un tubo de ensaye filtrar la mezcla con una gasa, llenándolo completamente.

4.Colocar un cubreobjetos en el tubo, de manera que el liquido este en contacto con el cubreobjetos.

5.Esperar de 5 a 10 min.

6.Colocar una gota de yodo-lugol sobre el portaobjetos, retirar el cubre con cuidado y ponerlo sobre el portaobjetos.
7. Examinar la muestra con el microscopio con el objetivo de 40x.

Conclusión.

Me gusto este método porque es muy sencillo y no te tomas más de 20 minutos en hacerlo, además de que no utilizas muchos materiales, ni equipos y es eficaz.

Metodo de Richie

                METODO DE CONCETRACION POR SEDIMENTACION

                                                     PRACTICA 5

Objetivo: Concentrar los quistes y huevos por sedimentación mediante la centrifugación con ayuda de formol y éter para separar y visualizar los elementos parasitarios.

Material:

·         Tubos de ensaye cónicos.

·         Gasas.

·         Embudos.

·         Vasos de precipitado.

·         Aplicadores y abatelenguas de madera.

·         Pipetas Pasteur con bulbo.

Método:

1.       Con el abatelenguas de madera se coloca una pequeña porción de heces en el vaso de precipitado, se le agrega 10 ml. de solución salina y con el agitador se homogeniza la mezcla.

2.       Se filtra la suspensión a través de la gasa colocándola en el embudo, recogiendo el filtrado en el tubo cónico.

3.       Se centrifuga la suspensión durante 2 minutos a 2000 r.p.m.

4.       Se decanta el liquido sobrenadante y se resuspende el sedimento con solución salina, centrifugando y resuspendiendo 2 veces más.

5.       Al último sedimento se le agrega 10 ml. de solución de formal de hído al 10%, se mezcla y se deja reposar durante 10 min.

6.       Se añaden despues 5 ml. de éter, se tapan los tubos y se agitan durante 30 seg.

7.       Se centrifuga durante 2 minutos a 2000 r.p.m.

8.       Despues de centrifugar se observan 4 capas:

o    Éter en la superficie.

o    Un tapón de restos fecales.

o    Formal de hído.

o    Sedimento en el fondo del tubo, conteniendo los elementos parasitarios.

9.       Se decanta el sobrenadante.

10.   Se introduce la pipeta Pasteur hasta el sedimento, se extrae con cuidado una gota del sedimento y se coloca en el portaobjetos.

11.   Se le añade una gota de yodo lugol y con uno de los ángulos del cubreobjetos se homogeniza, cubriéndole con el mismo.

12.   Se observa la preparación con el objetivo 10x y 40x.

Interpretación:

1.

2.

4.

3.

5.

6.

7.

8.

Resultados:

Comentario: 

Esta práctica me gusto, es como la de Faust pero a diferencia de esta los parásitos se concentran en el fondo del tubo, es sencilla y eficaz para encontrar huevecillos, quistes y trofozoítos.

FAUST - BIS

FAUST - BIS

Practica 4

Objetivo: Visualizar huevos livianos de helmintos (Necator, tricocéfalos, ascaris, H. nana)

Material:

•  3 tubos de ensaye
•  3 portaobjetos
• 3 cubre objetos
• 3 gasas
• 3 embudos
• 3 vasos precipitado
• 1 asa
• 1 mechero
•  3 agitadores
• 3 abatelenguas

Procedimiento:

1. Mezcla la porción de las heces con el abatelenguas, colócala dentro del vaso de precipitado y dilúyela con 10 ml. de agua.
2. Mézclala con el agitador. Coloca la gasa dentro del embudo, este a su vez será sostenido sobre el tubo de ensaye  para colar la disolución.
3. Ya colada se meterá a la centrifuga con un tiempo de 2500 RPM 1'.
4. Se saca de la centrifuga, se vacía el agua (dentro del recipiente donde venia la muestra), quedando solo el sedimento y a este se le agrega 10 ml. de  sulfato de zinc.
5.  Se vuelve a meter en la centrifuga durante 2500 RPM 1’.
6. Se vuelve a sacar de la centrifuga y con el asa (ya esterilizada con fuego) tomaremos porciones para colocarlas en el portaobjetos, el cual debe de contener una gota de yodo. Cada vez que vayamos a colocar una porción de heces, el asa debe de esterilizarse.
7. Colocamos el cubreobjetos encima del portaobjetos.
8. Con el microscopio observaremos si la muestra tiene algo anormal.

Interpretación:

1

2

3

4

5

6

9

7
Despues de decantar
 se centrifuga otras 2 veces

8
Para la tercera centrifugacion
se le echa sulfato de zinc

10
Se rompe el sedimento
antes de centrifugar 

Resultados:

Comentario:
Al parecer en la muestra solo hay grasa y fibras vegetales, no encontramos nada anormal.

Practica 2

COPROPARASITOLOGICO EN FRESCO

Introducción: El exámen en fresco es el más sencillo y el que menos equipo necesita para realizarse. Se recomienda para la búsqueda de trofozoítos de protozoarios móviles, huevos de helmintos y larvas de nematodos. Sin embargo este exámen puede o no revelar parásitos dependiendo de la intensidad de la infección.

Material:

- 2 Muestras fecales diferentes.

-4 Aplicadores de madera.

-4 Porta y 4 cubreobjetos.

-Solución salina isotónica.

-Lugol parasicológico.

Técnica:

1.     En un portaobjetos colocar una gota de solución salina isotónica.

2.     Con la punta del aplicador tomar una pequeña muestra de heces de aproximadamente 1 a 4 mg en muestras con moco y sangre, elegir estas partes para estudiar.

3.     Mezclar, procurando hacer una suspensión en preparación delgada y no frotis.

4.     Quitar de la suspensión fibras y fragmentos grandes.

5.     Colocar el cubreobjetos lentamente procurando no dejar burbujas.

6.     Examinar al microscopio en forma sistemática, a seco débil y a seco fuerte.

7.     Repetir la operación con una gota de lugol en lugar de la solución salina.

8.     Hacer este mismo proceso con ambas muestras de heces.

Interpretación:

Comentario: En esta ocasión si encontramos parásitos, al parecer no patógenos.  

PRACTICA 1 COPROPARASITOLOGICO EN FRESCO

PRACTICA 1

COPROPARASITOLOGICO EN FRESCO

Introducción: El exámen en fresco es el más sencillo y el que menos equipo necesita para realizarse. Se recomienda para la búsqueda de trofozoítos de protozoarios móviles, huevos de helmintos y larvas de nematodos. Sin embargo este exámen puede o no revelar parásitos dependiendo de la intensidad de la infección.

Material:

- 2 Muestras fecales diferentes.

-4 Aplicadores de madera.

-4 Porta y 4 cubreobjetos.

-Solución salina isotónica.

-Lugol parasicológico.

Técnica:

1.     En un portaobjetos colocar una gota de solución salina isotónica.

2.     Con la punta del aplicador tomar una pequeña muestra de heces de aproximadamente 1 a 4 mg en muestras con moco y sangre, elegir estas partes para estudiar.

3.     Mezclar, procurando hacer una suspensión en preparación delgada y no frotis.

4.     Quitar de la suspensión fibras y fragmentos grandes.

5.     Colocar el cubreobjetos lentamente procurando no dejar burbujas.

6.     Examinar al microscopio en forma sistemática, a seco débil y a seco fuerte.

7.     Repetir la operación con una gota de lugol en lugar de la solución salina.

8.     Hacer este mismo proceso con ambas muestras de heces.

 Interpretación:

1

2

3

4

5

6

 Comentario: Me gusto la practica porque es sencilla aunque no nos salió a la primera porque nos quedaban burbujas al colocar el cubre y no encontramos ningún parásito.